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Rabbia (idrofobia) - Diagnosi
Ultima recensione: 03.07.2025

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La diagnosi intravitale della rabbia consiste nella determinazione dell'antigene virale nei primi giorni della malattia utilizzando il metodo degli anticorpi fluorescenti nelle impronte corneali o nelle biopsie cutanee occipitali, nonché nella determinazione degli anticorpi dopo il 7°-10° giorno di malattia. Nei pazienti non vaccinati, la diagnosi di rabbia è confermata da un aumento di quattro volte del titolo anticorpale all'esame di sieri appaiati. Nei pazienti vaccinati, la diagnosi si basa sul livello assoluto di anticorpi neutralizzanti nel siero, nonché sulla presenza di questi anticorpi nel liquido cerebrospinale. Dopo la profilassi post-esposizione, gli anticorpi neutralizzanti nel liquido cerebrospinale sono solitamente assenti o il loro titolo è basso (inferiore a 1:64), mentre nella rabbia, il titolo di anticorpi neutralizzanti nel liquido cerebrospinale varia da 1:200 a 1:160.000. A scopo diagnostico, la PCR viene utilizzata anche per rilevare l'RNA del virus della rabbia nella biopsia cerebrale.
La diagnosi post-mortem della rabbia viene effettuata con diversi metodi. Il metodo istologico è ampiamente utilizzato: un metodo rapido, in cui la risposta può essere ottenuta in 1-2 ore con un'affidabilità dell'85-90%, basato sulla rilevazione dei corpi di Babesh-Negri negli strisci-impronte cerebrali. Quando il preparato viene trattato con coloranti acidi, i corpi di Babesh-Negri acquisiscono un colore rubino con una struttura interna basofila. La diagnosi biologica della rabbia si basa sull'infezione di animali da laboratorio (lattanti di topi bianchi, criceti siriani) con il materiale di prova e sulla rilevazione dei corpi di Babesh-Negri nel tessuto cerebrale dopo la morte degli animali; la risposta può essere ottenuta in 25-30 giorni. Vengono utilizzati anche metodi immunologici: il metodo degli anticorpi fluorescenti o ELISA, nonché il metodo virologico basato sull'isolamento e l'identificazione del virus della rabbia.
Per i test di laboratorio post-mortem sugli esseri umani, vengono utilizzati frammenti di tessuto cerebrale (2-3 g di tessuto cerebellare, corno di Ammone, corteccia cerebrale), ghiandole salivari e cornea, che vengono posti in un contenitore sterile con una soluzione di glicerolo al 50% in soluzione fisiologica. Il materiale deve essere raccolto in rigorose condizioni antiepidemiche e con misure di prevenzione individuali, e consegnato al laboratorio in un contenitore ermeticamente chiuso, in una borsa termica. La testa viene spesso inviata come materiale per i test di laboratorio sugli animali e, se l'animale è di piccola taglia, l'intera salma. Il materiale viene posto in sacchetti di polietilene, quindi in contenitori ermeticamente chiusi con pezzi di ghiaccio.
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Indicazioni per la consultazione con altri specialisti
In presenza di ferite multiple lacerazioni e suppurazioni è indicata una consulenza chirurgica, mentre in presenza di sintomi clinici e di laboratorio di encefalite di diversa natura è indicata una consulenza neurologica.
Indicazioni per il ricovero ospedaliero
Elenco delle indicazioni al ricovero ospedaliero delle vittime di morsi, graffi e sbavature da parte di animali e dei pazienti con idrofobia:
- indicazioni chirurgiche (lacerazioni multiple, morsi al viso, al collo, alle mani e alle dita);
- storia medica complessa;
- ferite da morso infette (tranne la mano);
- ferite da morso infette alla mano;
- anamnesi allergica aggravata, soggetti con reazioni insolite post-vaccinazione e complicazioni ai farmaci antirabbici e soggetti rivaccinati;
- storia neurologica gravata;
- storia psiconeurologica aggravata;
- Donne incinte che hanno subito morsi di animali:
- neonati che hanno subito morsi di animali;
- pazienti affetti da idrofobia e vittime di morsi di animali infetti.
Diagnosi differenziale della rabbia (idrofobia)
La diagnosi differenziale della rabbia viene effettuata con malattie accompagnate dallo sviluppo di sintomi clinici simili.
Diagnosi differenziale della rabbia
Cartello |
Rabbia |
Avvelenamento da atropina |
Tetano |
Lissofobia |
Periodo di incubazione |
Da 7 giorni a 1 anno o più (solitamente 30-90 giorni) |
2-4 ore |
1-30 giorni |
NO |
Insorgenza della malattia |
Graduale |
Speziato |
Acuto, subacuto |
Speziato |
Debolezza, stanchezza |
Caratteristica |
Caratteristica |
Caratteristica |
Mangiare |
Febbre |
Caratteristica |
Non tipico |
Caratteristica |
Non tipico |
Sudorazione |
Mangiare |
Mangiare |
Mangiare |
NO |
Mal di testa |
Mangiare |
Mangiare |
NO |
Mangiare |
Salivazione |
Espresso. Bocca secca nella fase di paralisi |
Bocca e gola secche |
Mangiare |
NO |
Cambiamenti mentali |
Costante |
Mangiare |
NO |
Mangiare |
Eccitabilità generale |
Mangiare |
Mangiare |
Mangiare |
Mangiare |
Disturbo del linguaggio e della deglutizione |
Mangiare |
Mangiare |
Mangiare |
NO |
Midriasi |
Mangiare |
Mangiare |
NO |
NO |
Agitazione psicomotoria |
Mangiare |
Mangiare |
NO |
NO |
Allucinazioni |
Mangiare |
Mangiare |
NO |
NO |
Crampi |
Mangiare |
Mangiare |
Sì, sullo sfondo dell'ipertonicità muscolare |
NO |
Rilassare i muscoli dopo i crampi |
Mangiare |
Mangiare |
NO |
Nessun crampo |
Spasmi dei muscoli della faringe. Trisma. |
Periodico |
NO |
Costante |
NO |
Perdita di coscienza |
Mangiare |
Mangiare |
Sì (prima della morte) |
NO |
Idrofobia |
Mangiare |
NO |
NO |
NO |
Paralisi, paresi |
Mangiare |
NO |
NO |
NO |
Progressione costante della malattia |
SÌ |
NO |
NO |
NO |
Emogramma |
Leucopenia, aneosinofilia |
Non cambiato |
Non ci sono cambiamenti caratteristici. |
Non cambiato |
Liquido cerebrospinale |
Pleiocitosi linfocitaria. Lieve aumento delle proteine |
Non cambiato |
Di norma non viene modificato |
Non cambiato |